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【图文导读】图1.IL-10+细胞外囊泡的制备和表征（A）用RFP标记的IL-10转染RAW细胞，发电然后用地塞米松刺激（B）在工程RAW细胞中对IL-10（绿色）和EV标记CD63（红色）进行免疫染色（C）在IL-10+细胞外囊泡中对EV相关的（Alix，发电CD63和CD81）和巨噬细胞相关的标志物（CD68和CD206）进行蛋白质印迹分析（D）IL-10+细胞外囊泡的尺寸分布和代表性TEM图像（E）显示从抗体阵列分析获得的每种细胞因子的蛋白质水平（F）细胞外囊泡中IL-10的ELISA分析，以及IL-10+细胞外囊泡中的IL-10和IL-10受体的蛋白质印迹分析（n=3或6）（G）通过实时定量PCR测量IL-10+细胞外囊泡中的IL-10mRNA（H-1）比较IL-10+细胞外囊泡和游离IL-10在不同条件下的稳定性，包括在37°C或-80°C下放置一周，在pH5.5溶液中12小时图2.肾靶向IL-10+EV（A）以亲代RAW细胞为对照的IL-10+EVs蛋白质组成的LC-MS/MS分析（B）蛋白质印迹分析（C-E）为了分析体内分布，给小鼠静脉注射DID标记的IL-10+EV（n=3）（C）注射后6、12、24、48和96小时（缺血时间35分钟）对指定器官的荧光强度成像（D）缺血20分钟，28分钟和35分钟的IRI肾脏在12小时时的荧光强度成像（E）代表性共聚焦图像显示DID标记的IL-10+EV在小管（包括近端小管和远端小管），内皮细胞（CD31）和巨噬细胞（CD68）中的蓄积（F-G）H/R诱导的TECs摄取PKH67标记的IL-10+EV（n=3）图3.IL-10+EV可预防小鼠的肾脏I/R损伤（A）实验设计示意图（B）IL-10+EV对血清肌酐的影响（n=10）（C）基于H＆E染色的肾小管损伤的量化（n=10）（D）肾皮质和髓质的H＆E染色的代表性图像（E-G）TUNEL染色和凋亡细胞定量的代表性图像（n=6）（F-H）代表性共聚焦图像和KIM-1+小管的定量（n=6）（I）肾脏组织中caspase-3的蛋白质印迹分析（n=3）（J）实时定量PCR分析肾脏组织中炎性细胞因子mRNA水平（n=6）图4.IL-10+EVs抑制mTOR信号传导并诱导线粒体保持线粒体稳态（A）肾组织中mTOR信号和LC3的蛋白质印迹分析（n=3）（B）肾小管自噬事件的代表性TEM图像（C-E）评估IL-10+EV对培养的TEC中线粒体功能的影响（n=3）（F）肾小管中线粒体的代表性TEM图像（G）肾脏切片中细胞色素C氧化酶亚基I（MT-CO1）表达的免疫组织化学分析（H）线粒体呼吸链复合体I的酶活性（n=6）图5.IL-10+EVs引起肾巨噬细胞表型转变（AB）分别用LPS，IL-4+IL-13或不同剂量的IL-10+EV刺激BMDM48小时（n=3）（C-E）IRI组与IL-10+EV组之间肾巨噬细胞表型变化的探讨图6.IL-10+EV抑制AKI-CKD转变（A）PAS染色的代表性图像（n=6）（B）矢状面Masson三色染色的代表性图像（n=6）（C）肾组织中胶原蛋白I和α-平滑肌肌动蛋白（β-SMA）的蛋白质印迹分析（n=4）（D）肾脏切片中CD68+巨噬细胞和CD3+T细胞的代表性共聚焦图像（n=6）（E）用于治疗缺血性AKI的IL-10+EV制剂的示意图【小结】细胞外囊泡（EVs）用作天然药物递送系统已引起强烈的研究兴趣。近年来，荣获开发了多种材料用作ZIBs正极，其中钒（V）基材料显示出较高的理论比容量和优异的循环稳定性。
（b）在1Ag-1时，首批不同弯曲状态下的充放电曲线。电力度融（e,g）c-V2O3@C和a-V2O5@C的TEM图像。
行业信息（e）比较已报道钒氧化物基复合电极的ZIBs和带有a-V2O5@C电池的能量和功率密度。工业文献链接：ElectrochemicallyInducedMOF-DerivedAmorphousV2O5forSuperiorRateAqueousZn-IonBatteries.（Angew.Chem.Int.Ed.,2020,DOI:10.1002/anie.202010287）本文由CQR编译。
